Invitrogen™ Kit ELISA humain sous-classe d’IgG

Description

L’ELISA de profil de sous-classe d’IgG humain (IgG Hu) quantifie les sous-classes d’IgG Hu dans le sérum ou le milieu de culture cellulaire humain. Le dosage reconnaîtra exclusivement l’igG1, IgG2, IgG3 ou IgG4 humain naturel ou recombinant.

Principe de la méthode

L’ELISA sandwich en phase solide de l’IL-10 US (dessai immuno-enzymatique) est conçu pour mesurer la quantité de la cible liée entre une paire d’anticorps appariée. Un anticorps spécifique à la cible a été prérevêtu dans les puits de la microplaque fournie. Les échantillons, étalons ou témoins sont ensuite ajoutés à ces puits et se lient à l’anticorps immobilisé (capture). Le sandwich est formé par l’ajout du second anticorps (détecteur), se liant à la cible sur un épitope différent de l’anticorps de capture. Une enzyme conjuguée a été incorporée dans le dosage. Après les étapes d’incubation et de lavage pour éliminer la microplaque des substances non liées, une solution de substrat réagit avec le complexe enzyme-anticorps-cible pour produire un signal mesurable. L’intensité de ce produit coloré est directement proportionnelle à la concentration de TP (p) présente dans l’échantillon d’origine.

Validation rigoureuse

Chaque lot fabriqué de ce kit ELISA est testé en fonction de sa qualité pour des critères tels que la sensibilité, la spécificité, la précision et la cohérence de lot à lot. Consultez le manuel du produit pour plus d’informations concernant la validation.

L’isotype d’un anticorps primaire et l’application dans laquelle il est utilisé peuvent entraîner une coloration de fond. Le bruit de fond des anticorps primaires peut être causé par la liaison aux récepteurs Fc sur les cellules cibles ; par des interactions non spécifiques avec les protéines cellulaires, les glucides et les lipides ; ou par autofluorescence cellulaire. Les anticorps de contrôle d’isotype peuvent agir comme des contrôles négatifs pour aider à différencier le signal de fond non spécifique du signal d’anticorps spécifique, car ils n’ont aucune spécificité pertinente pour un antigène cible. Bien que les contrôles d’isotypes soient les plus couramment utilisés dans la cytométrie en flux, ils sont utiles dans d’autres applications telles que l’immunoprécipitation de la chromatine (ChIP), l’immunohistochimie et les déplacements de gel. Les contrôles d’isotypes doivent correspondre à l’espèce et à l’isotype de l’anticorps primaire afin que le niveau de coloration spécifique par l’anticorps primaire puisse être déterminé avec précision. En cas d’utilisation d’anticorps primaires marqués directement, le contrôle d’isotype fonctionne mieux s’il est conjugué avec le même marquage que l’anticorps de test.

Informations sur la commande

Conditions d’expédition : Glace humide